SISTEMA CARDIOVASCULAR / SISTEMA CIRCULATÓRIO

Coração

 Coração

O coração é o órgão central do sistema circulatório, bombeando o sangue nos vasos através de suas contrações. Ele é formado pelo endocárdio, miocárdio e epicárdio, camadas semelhantes às túnicas dos vasos. O endocárdio é composto por células endoteliais e o miocárdio possui o músculo estriado cardíaco, que realiza a contração do órgão. 

Também se localiza nesta camada o nó sinoatrial, com as células marca-passo que fazem os batimentos cardíacos ocorrerem de maneira rítmica e constante através da geração de pulsos elétricos. Por fim, o epicárdio reveste o coração com tecido conjuntivo e vasos que o nutrem. O coração humano, similar ao das aves, é subdividido internamente em 4 câmaras: os átrios (direito e esquerdo) e os ventrículos (direito e esquerdo). O sangue venoso entra pelo no átrio direito, passa para o ventrículo direito que o bombeia para os pulmões. Depois de receber oxigênio, o sangue arterial retorna para o átrio esquerdo, sendo carreado para o ventrículo esquerdo que o envia para a circulação sistêmica, irrigando o corpo. O sistema vascular linfático também faz parte do sistema circulatório, transportando a linfa, líquido incolor que contém substâncias do metabolismo (como lipídios) e que conduz linfócitos. O sistema linfático sempre se move em uma única direção, dos órgãos para o coração. A linfa é recolhida pelos capilares linfáticos adjacentes aos capilares sanguíneos e as vênulas, sendo transportada pelos vasos linfáticos até os ductos linfáticos, que despejam a linfa nas veias próximas ao coração. Os vasos linfáticos possuem uma composição muito similar a das veias, inclusive contendo válvulas em seu interior que previne o refluxo de linfa. Os vasos transportam a linfa através dos linfonodos, responsáveis pela filtração do fluido e liberação de linfócitos.

O coração de uma pessoa tem o tamanho aproximado de sua mão fechada, e bombeia o sangue para todo o corpo, sem parar; localiza-se no interior da cavidade torácica, entre os dois pulmões. O ápice (ponta do coração) está voltado para baixo, para a esquerda e para frente. O peso médio do coração é de aproximadamente 300 gramas, variando com o tamanho e o sexo da pessoa. O coração humano, tem quatro cavidades:

• Átrio direito e átrio esquerdo, em sua parte superior;

• Ventrículo direito e ventrículo esquerdo, em sua parte inferior.

O sangue que entra no átrio direito passa para o ventrículo direito e o sangue que entra no átrio esquerdo passa para o ventrículo esquerdo. Um átrio não se comunica com o outro átrio, assim como um ventrículo não se comunica com o outro ventrículo. O sangue passa do átrio direito para o ventrículo direito através da valva atrioventricular direita; e passa do átrio esquerdo para o ventrículo esquerdo através da valva atrioventricular esquerda. O coração humano um órgão cavitário (que apresenta cavidade), basicamente constituído por três camadas:

• Pericárdio – é a membrana que reveste externamente o coração, como um saco. Esta membrana propicia uma superfície lisa e escorregadia ao coração, facilitando seu movimento ininterrupto;

• Endocárdio – é uma membrana que reveste a superfície interna das cavidades do coração;

• Miocárdio – é o músculo responsável pelas contrações vigorosas e involuntárias do coração; situa-se entre o pericárdio e o endocárdio.

FUNDAMENTOS DE MICROBIOLOGIA

 

Classificação dos ossos do corpo humano

 Classificação dos ossos do corpo humano

O sistema esquelético do ser humano é formado por 206 ossos classificados de acordo com o formato e a localização. Pela forma, os ossos são classificados em cinco principais tipos: longos, curtos, planos, irregulares e sesamoides. Relacionado com à localização, os ossos do corpo humano são classificados em axiais, compondo o eixo vertical do corpo (cabeça, tronco e pescoço). Os demais ossos são apendiculares, que formam os membros superiores e inferiores.

Ossos longos

São ossos cujo comprimento, apesar de ser variável, é maior que a largura e a espessura. Além disso, são resistentes pela sua estrutura ligeiramente curvada para absorver o estresse gerado pelo peso corporal. Esses ossos são constituídos de uma diáfise, um corpo formado por tecido ósseo compacto, e epífises, que são as extremidades em tecido ósseo esponjoso. Exemplos: fêmur, úmero, rádio, ulna, fíbula e falanges.

Ossos curtos

São ossos formados por tecido esponjoso, cuja superfície possui um fino revestimento de tecido compacto. O formato desses ossos é parecido com um cubo, já que comprimento, altura e largura são praticamente iguais. Exemplos: Ossos do punho (carpo) e ossos do tornozelo (tarso).

Ossos pneumáticos

Os ossos pneumáticos apresentam características distintas dos demais grupos e, por isso, são classificados de maneira específica. Eles apresentam cavidades, chamadas de seios, e são revestidos de mucosas cheias de ar. Exemplos: Ossos que fazem parte do crânio, como maxilar e temporal.

Ossos laminares

Também são chamados de ossos planos ou chatos e fornecem proteção. São formados, geralmente, por duas lâminas de tecido compacto quase paralelas e separadas por uma camada de tecido esponjoso, caracterizando-os como finos e compactos ossos do corpo . Exemplos: Ossos do crânio, como o frontal e o parietal, costelas e escápula.

Ossos irregulares

São ossos de estrutura complexa e com composição variável de tecido ósseo esponjoso e tecido ósseo compacto. Exemplos: Vértebras e calcâneo.

Ossos sesamoides

São ossos cujo diâmetro pode variar de milímetros a centímetros quando se desenvolvem em determinados tendões do corpo, conferindo proteção as regiões que suportam atritos, tensão e estresse físico. Uma pessoa pode apresentar um número diferente de ossos sesamoides, entretanto, normalmente todos possuem patelas, os maiores ossos sesamoides. Exemplos: Patelas localizadas no tendão do músculo quadríceps femoral.

Ossos suturais

Também chamados de ossos wormianos, são assim classificados por estarem localizados entre as articulações, também chamadas de suturas, dos ossos cranianos. Tratam-se dos ossos supranumerários ou acessórios, que podem crescer em umas pessoas e em outras não.

                                             fonte: https://www.todamateria.com.br/classificacao-dos-ossos/

SISTEMA ESQUELÉTICO

                                                               https://youtu.be/3i0JCOY7r0A 

                              fonte:  https://www.todamateria.com.br/sistema-esqueletico-exercicios/

 

fóvea da cabeça do rádio.

 

 FORAME MAGNO

sistema excretor

Tecnicas de Semeadura

TÉCNICAS DE SEMEADURA

TÉCNICAS DE SEMEADURA

Por Zilka Nanes - 8/03/2016

Fonte: http://www.prolab.com.br/

Técnicas de semeadura por esgotamento e da alça calibrada. Análise da morfologia de colônias isoladas de micro-organismos em meios sólidos.

(Microbiologia Básica / Profa . ZilkaNanes Lima)

 Copyright  ZILKA NANES LIMA © 2016 -  Todos os direitos reservados

1.   Técnica de semeadura por esgotamento

     a) Primeiro marcar o fundo da placa que vai ser processada com o protocolo ou nome do paciente, origem da amostra e data. 

b) Posteriormente fazer o inóculo em um dos cantos da superfície do meio de cultura; ou com swab com a amostra biológica recém coletada (quando a secreção estiver nele) ou transferir uma alíquota com alça bacteriológica (em caso de amostras biológicas que não são coletadas com swab, como as fezes; ou ainda quando se faz repique de culturas guardadas em geladeira em meios sólidos ou caldos); rolar o swab no mesmo lugar do meio algumas vezes. Descartar o swab em solução de hipoclorito de sódio à 0,5% ou em lixo hospitalar. As secreções podem ser colocadas em ágar Stuart, que é um meio de transporte, para preservar as características por mais tempo até o processamento. Quando utilizar Stuart, retornar o swab para o tubo e deixar à temperatura ambiente, assim a amostra ficará estável por 24 horas.

 c) Flambar a alça bacteriológica, deixar esfriar. Tocar encima do inóculo feito com o swab espalhando o mesmo com a alça fazendo estrias bem juntas em cerca de um terço da superfície  da placa, de modo gradativo vai se fazendo outras estrias mais afastadas uma das outras em novas direções até esgotar o material contido no inóculo. Preferencialmente usa-se um esquema de divisão da placa em 4 quadrantes sendo que a estria de cada quadrante toca no final da estria do quadrante anterior arrastando bactérias deste último. Nesse caso, deve-se flambar a alça após a inoculação de cada quadrante. Pode-se também optar por não tocar no final da estria do quadrante anterior, não sendo assim necessário flambar a alça após cada quadrante. A estria do último quadrante ocupa a maior parte da placa. Alternativamente pode-se fazer 3 estrias, a primeira ocupando metade da placa e as outras duas um quarto da placa cada. Neste modo as estrias não se tocam. Caso o meio do processamento seja o ágar Sangue, após fazer as estrias, furar o meio de cultura encima das estrias até o fundo da placa com a alça bacteriológica na posição vertical. 
‡           d) Incubar a placa invertida em estufa bacteriológica à 36 ± 2 oC por 24 horas. Após cerca de 24 horas avaliar as características morfológicas das colônias isoladas. O ágar Sangue deve ser incubado em microaerofilia na mesma temperatura, colocar as placas dentro de um jarra de vidro ou lata, acender uma vela, deixar acessa dentro da jarra e fechá-la; a vela irá consumir boa parte do oxigênio e gerar o aumento de dióxido de carbono.

       Figura 1 - Esquema para semeadura de meios de cultura pela técnica do esgotamento.

Fonte: Autora (arquivo pessoal)

 Objetivos da técnica de esgotamento:

A técnica de semeadura por esgotamento é utilizada para obtenção de colônias isoladas em meio sólido. O material a ser processado pode ser o micro-organismo em caldo ou em ágar ou amostras clínicas tais como secreções. A técnica visa obter colônias isoladas de bactérias ou leveduras presentes em materiais biológicos, permitindo a diferenciação de diferentes tipos morfológicos.

A técnica do esgotamento em placa consiste em depor sobre um ponto da superfície do meio uma alíquota do material e depois espalhá-lo em três ou quatro setores, por meio de alça de platina, sem recarregá-la, de maneira a obter quantidades progressivamente menores do material. Temos que obter rarefação suficiente do material, de modo a formar colônias perfeitamente isoladas.

O sucesso da semeadura está em:

 a) grande número de estrias;

 b) não perfurar o meio;

 c) não voltar a alça sobre a estria

 d) pegar pequena quantidade de material para semear. 

 e) SEMPRE TRABALHAR COM TODO MATERIAL PRÓXIMO À CHAMA DO BICO           DE BUNSEN PARA EVITAR CONTAMINAÇÃO EXTERNA NO SEU EXPERIMENTO.

 f) SEMPRE FLAMBAR A ALÇA BACTERIOLÓGICA QUANDO NECESSÁRIO.

 g)DESCARTAR SWABS CONTAMINADOS EM SOLUÇÃO DE HIPOCLORITO DE           SÓDIO À 0,5 %. 

                  Figura 2 - Colônias de Staphylococcus spp. em ágar Müeller Hinton, coletadas com 
        swab umedecido  em solução fisiológica da parte de trás do pavilhão auricular direito.  

Fonte: Autora (arquivo pessoal)

2. Técnica da alça calibrada

         a) Homogeneizar a amostra de urina (Primeira micção - jato médio), ou qualquer outra amostra líquida que se queira quantificar os micro-organismos. Não centrifugar.

       b) Imergir a alça calibrada de 0,001 mL (1 µL) na urina de forma vertical, ou alça de 0,01mL (10 µL) em outras amostras. Observar se preencheu todo o espaço do aro com urina. Observar se não ficou bolhas no líquido que preenche o aro.

        c) Semear primeiro em placa de ágar CLED (não seletivo), imergir novamente a alça na urina e em seguida semear a placa de ágar MacConkey (seletivo) / Em caso de urina de gestante adicionar uma placa de ágar Sangue e semear primeiro este meio, não esquecer de fazer as picadas com alça para evidenciar hemólise. 

         d) Incubação: em estufa à 35 ±1 oC por 18 a 24 horas.

As placas de ágar CLED ou ágar MacConkey deverão ser incubadas em estufa bacteriológica ambiente por 24 horas (e ágar sangue em microaerofilia), devendo este período ser prolongado quando NÃO HOUVER CRESCIMENTO NO PRIMEIRO DIA DE INCUBAÇÃO, e as condições clínicas justificarem ou quando houver suspeita de infecção por Gram-positivos (Enterococcus spp, Streptococcus agalactiae ou leveduras). O tempo de incubação também deverá ser prolongado para 48 - 72 horas se na análise da sedimentoscopia da urina foi observada a presença de freqüentes micro-organismos ou número elevado de leucócitos e se o resultado da bacterioscopia sugere infecção urinária. Em urinas de pacientes hospitalizados havendo suspeita de ITU deixar as placas incubadas por até 5 dias, principalmente o ágar MacConkey, pois a Stenotrophomonas maltophilia pode crescer somente após este tempo.

                        Figura 3 - Esquema para semeadura de meios de cultura pela técnica da                                                      alça calibrada (técnica quantitativa)

Fonte: Autora (arquivo pessoal)

                                          Figura 4 - Técnica da alça calibrada (quantitativa) 
                               54.000 colônias por mL de Candida parapsilosis em ágar CLED. 
                                                             (CLED = cystine lactose eletrolyte deficient) 

Fonte: Autora (arquivo pessoal)

                      Interpretação: Alça de 1 microlitro - 1 colônia = 1.000 ou 103 UFC/mL

                                               alça de 10 microlitros - 1 colônia = 100 ou 102 UFC/mL

Explicação da técnica: Em sua execução a alça bacteriológica é introduzida em uma amostra de urina bem homogeneizada, fazendo-se movimentos para baixo e para cima no sentido vertical. A alça carregada é então utilizada para inocular cada meio de cultura, fazendo-se, inicialmente, uma linha reta no centro da placa e completando-se o espalhamento com uma série de passagens em um ângulo de 90º, através da linha original. Importante item de controle de qualidade é utilizar alças calibradas periodicamente aferidas ou, quando possível, alças descartáveis.

Objetivos da técnica da alça calibrada: Quantificar micro-organismos em amostras líquidas. Isolar colônias de micro-organismos permitindo assim a descrição da sua morfologia.

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3.Análise morfológica da colônia (Utilizar os espaços que seguem para anotar a interpretação destas características e ao final sugerir o possível gênero e/ou espécie do micro-organismo).

Meio de cultura: _______________________ Densidade: _________________________

Tamanho/Odor: _______________________ Cor: _______________________________

Borda ou forma:_______________________  Consistência/Aparência: _______________

Elevação:____________________________ Hemólise em ágar Sangue: _____________

Sugerir qual é o micro-organismo: ___________________________________________

Tabela 1. Características do crescimento de alguns micro-organismos.

Micro-organismo	Tamanho / Odor	Borda ou forma	Elevação	Densidade	Cor	Consistência/ Aparência	Hemólise em AS
Staphylococcus aureus	Grande /Queijo	Circular	Convexa	Opaca	Amarela ou branca	Cremosa	Em geral beta
Staphylococcus coagulase-negativa	Médio /Queijo	Circular	Elevada	Opaca	Branco-acizentada	Cremosa	Em geral sem
Streptococcus do grupo viridans	Pequeno /Caramelo	Irregular, puntiforme	Achatada	Opaca	Branco-acizentada	Embaçada	Alfa
Streptococcus pneumoniae	Pequeno	Circular	Umbilicada Achatada	Transparente	Cinza	Brilhante Mucóide	Alfa
Streptococcus pyogenes	Pequeno	Puntiforme	Convexa	Translúcida	Cinza	Brilhante	Beta
Streptococcus agalactiae	Médio	Circular	Convexa	Translúcida	Cinza	Cremosa	Beta
Enterococcus faecalis	Médio /Caramelo	Circular	Elevada	Opaca	Cinza	Brilhante	Em geral sem
Escherichia coli	Médio /Vinagre	Circular	Achatada	Opaca	Cinza (AS) Rosa(MC)	Seca	Em geral beta
Klebsiella spp.	Grande /Fermento de pão	Circular	Convexa	Opaca	Cinza(AS) Rosa(MC)	Mucóide	Sem hemólise
Salmonella spp.	Pequeno /Fétido	Circular	Convexa	Translúcida	Centro preto(SS) Incolor(MC)	Brilhante	Sem hemólise
Proteus spp.	Médio /Fétido	Ondulada	Achatada	Translúcida	Incolor (MC)	Brilhante	Sem hemólise
Pseudomonas aeruginosa	Médio /Uva	Irregular	Achatada	Transparente	Incolor (MC). Pigmento esverdeado.	Brilhante	Com ou sem.
Candida spp.	Médio /Pão	Circular, filamentosa	Elevada	Opaca	Branca	Cremosa	Sem

AS= Agar sangue; MC=Agar MacConkey; SS= Agar Salmonella-Shigella;

Tamanho das colônias (mm) : Grande = maior que 1 mm de diâmetro (Ex: Klebsiella pneumoniae)

                                    Média = 1 mm de diâmetro (Ex: Enterococcus faecalis)

                                    Pequena = menor que 1 mm de diâmentro (Ex: Streptococcus pyogenes)

Referências bibliográficas:

https://microimunoliga.blogspot.com/2016/08/pratica-6.html

- Oplustil, C.P.; Zoccoli, C.M.; Tobouti, N.R.; Sinto, S.I. Procedimentos Básicos em Microbiologia Clínica, 3ª Ed. Sarvier, São Paulo, SP, 2010.

- http://coral.ufsm.br/microgeral/Praticas/Roteito%20pratica%20semeaduras.pdf Acessado em 03 de Julho de 2013.

- Conhecimento adquirido

                                                                              Professora Zilka Nanes Lima    (Professora de Microbiologia e Imunologia Clínica)